飛舟玻璃--血球計數板的使用方法是什么？

根據待測菌懸液的濃度，加入無菌水適當稀釋（一般在斜面上稀釋100倍），以每個細胞的細菌數作為度數。

取一個干凈的血細胞計數器，用蓋玻片覆蓋計數區。

將菌懸液搖勻，用滴管取少許，沿蓋玻片下緣從計數板中間平臺兩側的凹槽中滴一小滴（不要太多），讓菌懸液利用液體的表面。張力充滿計數區，以免產生氣泡，并用吸水紙吸去槽內流出的多余菌懸液。也可以將菌懸液直接滴在計數區上（不要讓計數區兩邊的平臺沾上菌懸液，以免加蓋玻片后增加計數區的深度） ，然后蓋上玻璃（不要產生氣泡）。

靜置片刻，讓細胞沉淀在計數板上，不再隨液漂移。將血細胞計數器放在顯微鏡的舞臺上并牢牢夾住。先找到低倍鏡下的計數區，然后切換到高倍鏡下觀察計數。由于活細胞的折射率與水相似，因此觀察時應減弱光強。

計數時，若計數區由16個中間方格組成，則按對角線分別統計左上、左下、右上、右下4個中間方格（即100個小方格）內的細菌數方向。如果是由25個中方格組成的計數區，除了統計上述4個中方格外，還需要統計中央中方格（即80個小方格）的細菌數。為保證計數的準確性，避免重復計數和漏記，計數時落入網格線上的細胞統計應有統一規定。如果細菌位于大格子的雙線，計數時要數上線不數下線，數左線不數右線，以減少誤差。即位于該格子的上行和左行的單元格按規定計入該格子，位于該格子下行和右行的格子計入相應的格子。見右圖：即這個格子中有3個被計數的單元格。

對于出芽酵母，當芽長到母細胞的一半大時，可以算作兩個細菌。每個樣品重復計數2-3次（每次數值不能相差太大，否則需重復操作），按公式計算每mL（g）菌懸液中所含細胞數。

測量完成后，取下蓋玻片，用水沖洗血細胞計數器。請勿用硬物清洗或擦拭，以免損壞網格刻度。洗完后，自己吹干或用吹風機吹干，放入盒子里存放。